優點
(1)相互作用的
蛋白質都是經翻譯後修飾的,處於天然狀態;
(2)蛋白的相互作用是在自然狀態下進行的,可以避免人為的影響;
(3)可以分離得到天然狀態的相互作用蛋白複合物。
缺點
(1)可能檢測不到低親和力和瞬間的蛋白質-蛋白質相互作用;
(2)兩種蛋白質的結合可能不是直接結合,而可能有第三者在中間起橋樑作用;
(3)必須在實驗前預測目的蛋白是什麼,以選擇最後檢測的抗體,所以,若預測不正確,實驗就得不到結果,方法本身具有冒險性。
(4)靈敏度沒有親和色譜高。
實驗過程
(1)轉染後24-48 h 可收穫細胞,加入適量細胞裂解緩衝液(含蛋白酶抑制劑),冰上裂解30min, 細胞裂解液於4°C, 最大轉速離心30 min後取上清;
(2)取少量裂解液以備Western blot分析,剩餘裂解液加1μg相應的抗體加入到細胞裂解液,4°C緩慢搖晃孵育過夜;
(3)取10μl protein A 瓊脂糖珠,用適量裂解緩衝液洗3 次,每次3,000 rpm離心3 min;
(4)將預處理過的10μl protein A 瓊脂糖珠加入到和抗體孵育過夜的細胞裂解液中4°C緩慢搖晃孵育2-4h,使抗體與protein A瓊脂糖珠耦聯;
(5)免疫沉澱反應後,在4°C 以3,000 rpm 速度離心3 min,將瓊脂糖珠離心至管底;將上清小心吸去,瓊脂糖珠用1ml裂解緩衝液洗3-4次;最後加入15μl的2×SDS 上樣緩衝液,沸水煮5分鐘;
注意的問題:
(1)細胞裂解採用溫和的裂解條件,不能破壞細胞記憶體在的所有蛋白質-蛋白質相互作用,多採用非離子變性劑(NP40或
Triton X-100)。每種細胞的裂解條件是不一樣的,通過經驗確定。不能用高濃度的
變性劑(0.2%SDS),細胞裂解液中要加各種
酶抑制劑,如商品化的cocktailer。
(2)使用明確的抗體,可以將幾種抗體共同使用。
(3)使用對照抗體:
注意事項
(1) 確保共沉澱的蛋白是由所加入的抗體沉澱得到的,而並非外源非特異蛋白,
單克隆抗體的使用有助於避免污染的發生;
(2) 要確保抗體的特異性,即在不表達抗原的細胞溶解物中添加抗體後不會引起共沉澱;
(3) 確定蛋白間的相互作用是發生在細胞中,而不是由於細胞的溶解才發生的,這需要進行蛋白質的定位來確定。