基本介紹
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活體染色定義
因此活染技術通常可用來研究生活狀態下的細胞形態結構和生理、病理狀態。根據所用染色劑的性質和染色方法的不同,通常把活體染色分為體內活染與體外活染兩類。體內活染是以膠體狀的染料溶液注入動、植物體內,染料的膠粒固定、堆積在細胞內某些特殊結構里,達到易於識別的目的。它是由活的動、植物分離出部分細胞或組織小塊,以染料溶液浸染,染料被選擇固定在活細胞的某種結構上而顯色。詹納斯綠B 是毒性較小的鹼性染料,可專一性地對線粒體進行超活染色,這是由於線粒體內的細胞色素氧化酶系的作用,使染料始終保持氧化狀態(即有色狀態),呈藍綠色;而線粒體周圍的細胞質中,這些染料被還原為無色的色基(即無色狀態)。
超活染色 - 實驗用品
[2] 器材 顯微鏡、恆溫水浴鍋、解剖盤、剪刀、表面皿、吸管、牙籤、吸水紙。
[3] 試劑 1.Ringer 溶液 (氯化鈉 0.85g)(氯化鉀 0.25g)(氯化鈣 0.03g)(蒸餾水 100ml) 2. 1%詹納斯綠B 溶液(原液) 稱取50mg 詹納斯綠B 溶於5ml Ringer,稍加微熱(30~40℃),使之溶解,用濾紙過濾後,即為1%原液。
超活染色 - 實驗操作
[1] 人口腔黏膜上皮細胞線粒體的超活染色觀察
(1) 取清潔載玻片放在37℃恆溫水浴鍋的金屬板上,滴2 滴詹納斯綠B 套用染液。 (2) 實驗者用牙籤寬頭在自己口腔黏膜處稍用力刮取上皮細胞,將刮下的粘液狀物放入載玻片的染液滴中,染色10~15min(注意不可使染液乾燥,必要時可再加滴染液),蓋上蓋玻片,用吸水紙吸去四周溢出的染液,置顯微鏡下觀察。 (3) 在低倍鏡下,選擇平展的口腔上皮細胞,換高倍鏡或油鏡進行觀察。可見扁平狀上皮細胞的核周圍胞質中,分布著一些被染或藍綠色的顆粒狀或短棒狀的結構,即是線粒體。
[2] 小白鼠肝細胞線粒體的超活染色觀察
(1) 用脊椎脫臼法處死小白鼠,置於解剖盤中,剪開腹腔,取小白鼠肝邊緣較薄的肝組織塊,放入表面皿內。用吸管吸取Ringer 液,反覆浸泡沖洗肝臟,洗去血液。
(2) 在乾淨的凹面載玻片的凹穴中, 滴加詹納綠B 套用液,再將肝組織塊移入染液,注意不可將組織塊完全淹沒,要使組織塊上面部分半露在染液外,這樣細胞內的線粒體表面可充分得到氧化,易被染色。當組織塊邊緣被染成藍綠色即成(—般需染20~30min)。 (3) 吸去染液,滴加Ringer 溶液,用眼科剪將組織塊著色部分剪碎,使細胞或細胞群散出。然後,用吸管吸取分離出的細胞懸液,滴一滴子載玻片上,蓋上蓋玻片進行觀察。
(4) 在低倍鏡下選擇不重疊的肝細胞,在高倍鏡或油鏡下觀察,可見具有l~2 個核的肝細胞質中,有許多被染成藍綠色的線粒體,注意其形態和分布狀況。
[3] 洋蔥鱗莖表皮細胞線粒中的超活染色觀察
(1) 用吸管吸取詹納斯綠B 套用染液,滴一滴於乾淨的載破片上,然後撕取一小片洋蔥鱗莖內表皮,置於染液中,染色10~15min。 (2) 用吸管吸去染液,加—滴Ringer 液,注意使內表皮組織展平,蓋上蓋玻片進行觀察。
(3) 在高倍鏡下,可見洋蔥表皮細胞中央被一大液泡所占據、細胞核被擠至—側細胞壁處。細觀察細胞質中線粒體的形態與分布。