丁基黃原酸鹽

丁基黃原酸鹽即黃藥，為黃色粉末固狀，有刺激性氣味有毒，點火燃燒，易受水潮解，性質不穩定，遇鹽加速分解，易溶於水和丙酮和醇中·對人和動物的肝臟、腎臟和神經系統造成損傷。丁基黃原酸鹽在常溫下為淺黃色至黃色粉狀或棒粒狀固體,有毒,易燃,易吸潮,易溶於水、丙酮和部分醇中,性質不穩定,在酸性介質中加速分解。丁基黃原酸鹽對人體和畜禽的危害主要表現在傷及神經系統和肝臟器官,對造血系統也有不良影響。

基本介紹

• 中文名：丁基黃原酸鹽
• 外文名：Butyl xanthate
• 外觀：黃色粉末固狀
• 警示術語：有刺激性氣味
• 安全術語：有毒
• 主要危害：對人和動物的肝臟造成損傷

介紹

丁基黃原酸鹽,俗稱“丁基黃藥”,是一種重要的金屬硫化礦捕集藥劑、橡膠硫化促進劑,廣泛套用於各種重金屬硫化礦(如PbS、ZnS、NiS、CuS 等) 和部分貴金屬硫化礦(如Au2 S3 、Ag2 S 等) 的浮選捕收。黃藥因呈黃色故而得名。丁基黃原酸鹽在常溫下為淺黃色至黃色粉狀或棒粒狀固體,有毒,易燃,易吸潮,易溶於水、丙酮和部分醇中,性質不穩定,在酸性介質中加速分解。丁基黃原酸鹽對人體和畜禽的危害主要表現在傷及神經系統和肝臟器官,對造血系統也有不良影響。在金屬硫化礦的浮選捕集過程中,丁基黃原酸鹽大部分留在礦石表面,只有很少部分隨廢水排入地表水,污染飲用水源和環境。因而丁基黃原酸鹽已被列為集中式生活飲用水地表水源地特定監測項目之一。

對丁基黃原酸鹽的測定,大多採用銅試劑亞銅分光光度法、萃取比色法、離子選擇電極法等。萃取比色法過程比較繁瑣,條件苛刻,使用有毒有害的有機溶劑,危害操作人員身心健康,並對環境造成二次污染,不利於實際工作的開展;離子選擇性電極法引起干擾的成分複雜,受待測水樣的pH、水溫、電極的回響時間等影響,水樣中較高濃度的鈣、鋁、銅和鐵離子等也均有干擾,特別是具有良好選擇性的電極較少。銅試劑亞銅分光光度法雖然靈敏度較低、重現性差,但因其具備投資費用少、便於推廣普及、適合大批量水樣分析和不需使用濃酸、濃鹼、有機溶劑等有毒有害試劑等特點,而成為首選測定方法。主要以備受關注的飲用水源水為例,套用GB/T5750. 8 - 2006《銅試劑亞銅分光光度法》進行飲用水源水中丁基黃原酸鹽測定的方法原理、儀器與試劑和一些關鍵操作技術問題的探討,同時給出了丁基黃原酸鹽測定過程中常見操作技術問題的解決方法。

方法原理

該方法的原理是在pH = 5.2 的鹽酸羥胺還原體系中,將銅離子還原成亞銅離子。水樣中的丁基黃原酸鹽與亞銅離子生成黃原酸亞銅後,被環己烷萃取。黃原酸亞銅再與銅試劑作用,生成橙黃色

的銅試劑亞銅,其色度與丁基黃原酸鹽含量成線性關係,符合朗伯- 比爾定律,在波長436nm 處有最大吸收,利用可見光分光光度計對水樣進行吸光度定量,從而實現丁基黃原酸鹽的測定。

儀器設備

測定中需使用的玻璃器皿(包括採樣瓶) 要求內壁光潔無磨損,防止丁基黃原酸鹽被吸附。所有玻璃器皿應徹底洗淨,先用洗滌劑浸泡清洗,然後用(1+9) 鹽酸溶液或(1+35) 硫酸溶液浸泡15min ,最後依次用自來水、純水沖洗乾淨,這樣可以減少空白實驗的吸光度。玻璃器皿乾燥後方能使用。天平、容量瓶、移液管、刻度吸管等計量儀器必須按有關規定檢定合格後方可使用。

水樣採集保存

水樣中丁基黃原酸鹽含量高低不等,且其易分解,在pH 高於10或低於9時,分解加速,在酸性介質中則迅速分解生成CS2和相應的醇,而生成的醇可自動催化分解反應。丁基黃原酸鹽水樣的採集與保存方法對分析結果有重大影響,具體可採用以下方法:把水樣採集在經充分洗淨並乾燥的1000mL 棕色玻璃瓶中,立即放入冰櫃中或樣品運輸貯藏箱中(箱內溫度控制在0～4℃) 冷藏保存,24h內測定;若採樣後不能及時進行測定,水樣需放置較長時間,可用pH計或廣泛pH 試紙測試其pH值,向水樣中滴加20g/L (m/ v) 氫氧化鈉溶液或1 %(v/v) 鹽酸溶液調節水樣pH 至9～10 (用廣泛pH試紙測試) ,立即放入冰櫃中或樣品運輸貯藏箱中冷藏保存,1周內測定。

為保證所加保存劑的質量及避免水樣在採集運輸過程中受到玷污,要求採樣人員在現場以純水代替水樣作全程式空白試驗,全程式空白試驗樣品的測定值必須低於銅試劑亞銅分光光度法( GB/T5750. 8 - 2006) 方法規定的檢出限(0.002mg/L) ,否則應查找原因。

試劑選擇要求

化學試劑(包括溶劑) 在水質檢測分析中的地位極其重要。從取樣到樣品處理、樣品測定都離不開化學試劑,一旦使用的化學試劑質量、純度等達不到分析實驗要求,就會對測定結果造成顯著影響。在丁基黃原酸鹽的測定分析中應嚴格使用GB/T5750. 8 - 2006《銅試劑亞銅分光光度法》所列出的各種最新生產的合格的試劑(分析純以上) ,推薦使用各類試劑或純度較高的進口分裝試劑,對本項目影響較大的試劑主要是鹽酸羥胺和丁基黃原酸鹽標準物質。

鹽酸羥胺試劑的質量對本項目至關重要,它直接影響到測定的成敗及結果的準確性。本測定中要求所用鹽酸羥胺試劑是最新生產的、合格的且在有效期範圍之內的。合格的鹽酸羥胺試劑應該為白色細結晶,但由於試劑質量存在差異,有些廠家、批號的試劑達不到這個要求,致使實驗失敗或靈敏度降低。因此,筆者推薦使用國藥集團上海化學試劑有限公司生產的分析純鹽酸羥胺。由於鹽酸羥胺試劑在空氣中易吸濕潮解而失效,使用完畢後應貯於乾燥器中或於冰櫃中2～5℃密封冷藏避光保存。

丁基黃原酸鹽標準物質的質量對本項目也非常重要,它直接影響到本項目標準溶液的配製與標準曲線的繪製。本測定中,筆者推薦使用日本東京化成工業株式會社出品的、最新生產的且在有效期範圍之內的丁基黃原酸鉀(簡稱PBX ,分析純) 。考慮到丁基黃原酸鉀試劑放置於空氣中易吸潮分解而失效,使用完畢後應立即於冰櫃中2～5℃密封冷藏避光保存,丁基黃原酸鹽標準溶液宜現用現配。

水樣預處理

1) 若水樣無色、透明、澄清,可直接量取適量以供分析;若水樣渾濁或含有不溶性物質,可採用以下兩種方法去除干擾: ①自然沉降法,將水樣靜置沉降30分鐘後量取適量上清液供作分析; ②抽濾處理法,將水樣經0. 45μm 濾膜抽濾處理,去除不溶性物質干擾,量取適量過濾後水樣供作分析,經抽濾預處理水樣須同時以純水經相同步驟做空白試驗。

2) 別用pH計或廣泛p H 試紙測試各水樣的pH 值,用4 g/ L (m/v) 氫氧化鈉溶液或0. 8 %(v/ v)鹽酸溶液調節水樣的pH 值至5～6之間。

3) 若水樣中S2-質量濃度大於等於0.1μg/L將對測定產生負干擾,則需進行氯化處理,使水樣中游離氯為0. 5 mg/L ,即可消除S2-的干擾,經氯化處理的水樣,需同時以純水代替水樣做試劑空白。

4) 賀心然等通過大量實驗證實,在6.00 mg/L 的丁基黃原酸鹽標準溶液中分別加入20倍量(即120. 00 mg/L ,下同) 的銅離子、30倍量的錳離子、100倍量的鋅離子、100倍量的鐵離子,在此反應體系中對丁基黃原酸鹽的測定無影響。

測定注意事項

溶解時間的控制

標準方法上指出添加了鹽酸羥胺的標準管和水樣管,應於混勻後靜置30min ,以確保鹽酸羥胺固體試劑的充分溶解。通過大量的分析實踐發現,由於鹽酸羥胺屬強還原劑,其長時間露置於空氣中易氧化分解而失效,因此,建議鹽酸羥胺的溶解靜置時間不宜太長,放置3～5min ,待分液漏斗中氣泡消失即可。

振搖萃取方式的選擇

考慮到振盪萃取效果的一致性與完全性,測定中,將待振盪萃取的水樣和標準系列經預先振搖放氣兩次後,統一放置於分液漏斗振盪器上,設定振盪頻率為300次/ 分鐘,機械振搖4min後,靜置分層。

靜置分層時間的確定

靜置的目的是使不穩定的乳濁液分層。考慮到測定中需使用不穩定試劑及有不穩定產物生成,對於靜置分層時間的選擇,筆者通過大量的分析實踐認為,在將分液漏斗經過4分鐘劇烈機械振搖後,靜置至液體能夠分為清晰的上下兩層(有機相層與水相層) ,下層水相層清澈透明,且分液漏斗中氣泡消失即可,一般情況須靜置10min ,成分複雜水樣須靜置較長時間( 30min左右) , 以不超過30min為宜。

pH5.2 純水的替換

銅試劑亞銅分光光度法(GB/T5750. 8-2006)第三步中指出,在分去分液漏斗中水層後,向各分液漏斗中分別加入10mL pH5. 2的純水洗滌分液漏斗,振搖30s ,靜置分層。考慮到純水精密pH值定位工作的繁雜性,通過大量的分析實踐認為,pH5.2的純水可以直接用pH5.2的乙酸- 乙酸鈉緩衝溶液代替。

銅試劑加入量的量化

考慮到標準分析方法上規定加入少量,通過大量的分析實踐認為,銅試劑(二乙基二硫代氨基甲酸鈉,簡稱DDTC) 的加入量以50～60mg為宜,與加入的有機相層後充分振盪混勻後,至出現剩餘少量DDTC未溶解即可。

萃取後乳化現象的消除

由於水樣組成複雜,有些水樣在加入有機溶劑進行振盪萃取,靜置分層後,上層有機相層出現大量泡沫和小氣泡,下層水層也出現渾濁,即出現了乳化現象,形成乳濁液而難以分離。對此,標準分析方法中雖採用脫脂棉吸水以達到乾燥有機相層的目的,但其未能有效消除萃取後有機相層中的乳化現象。

通過大量的分析實踐認為,由於無水硫酸鈉粉末極易吸水並能與之充分結合形成緻密團塊,且無水硫酸鈉粉末呈中性,其不與有機相層中組分發生反應,因此,可以充分利用無水硫酸鈉粉末的這些特性以達到乾燥有機相層、破除乳化的目的,具體做法如下:將經pH5. 2的乙酸- 乙酸鈉緩衝溶液三次充分振盪洗滌的有機相層(徹底分去水層) 自分液漏斗頸部放入到預先填充有3～5cm高無水硫酸鈉粉末的玻璃層析柱中,使經無水硫酸鈉粉末充分吸水乾燥後的有機相層放入到預先填充有50～60mgDDTC 和1 滴純水的10 mL具塞比色管中,若有機相層在玻璃層析柱中出現滯流現象,可用洗耳球自玻璃層析柱上口吹入空氣,使有機相層在大氣壓的作用下緩緩放入到上述10mL具塞玻璃磨口比色管中,充分振盪比色管(此時應剩餘少量DDTC未溶解) ,混勻,靜置顯色15 min 。

經無水硫酸鈉粉末乾燥破乳的水樣須同時以純水代替水樣做試劑空白。

吸光度測定時的注意事項

1) 本項目中,水樣和標準系列吸光度的測定採用可見光分光光度計。使用中應保持光度計樣品池乾燥,光度計所配備的乾燥劑應定期更換。若干燥劑失效將導致: ①數顯不穩,無法調“0”點或“100 %”點(電路或光電管受潮) ; ②反射鏡發霉或沾污,影響光效率,雜散光增加。鑒於上述原因,分光光度計的放置地點應遠離水池等濕度大的地方,乾燥劑應定期更換或烘烤。

2) 吸光度測定中,應保證比色皿不傾斜放置。稍許傾斜,就會使參比樣品與待測樣品的吸收光程長度不一致,還可能使入射光不能全部通過樣品池,導致測試比準確度不符合要求。

3) 吸光度測定中,應保持比色皿透光面清潔,防止沾污的有色物質影響測定;測定標準系列時,應從低濃度測至高濃度。

4) 吸光度測定中,應注意不可將10 mL 具塞玻璃磨口比色管中的水層放入到比色皿中,因水會使分光光度計讀數值不穩,干擾測定。

改進法標準曲線的繪製

依據《銅試劑亞銅分光光度法GB/T5750.8 -2006》和幾點改進步驟,採用最小二乘法可以得出如下丁基黃原酸鹽標準系列的線性回歸方程。

改進法檢出限的測定

檢出限的測定目的是確定改進法測定的檢出限是否低於方法規定的檢出限;了解實驗用水、試劑、儀器、實驗室環境條件是否符合質量控制要求;了解分析人員的操作水平。

用純水代替水樣,與改進法標準曲線的繪製同步,每天測定2個空白平行樣,連測5天,計算10 次空白平行樣吸光度對應的空白試驗濃度值的批內標準偏差Swb為0.00022mg/L。

改進法精密度和準確度

利用已配製的100.0 mg/L的丁基黃原酸鹽標準儲備溶液經500倍和200倍兩個不同比例準確稀釋後,製得0.20 mg/L、0.50mg/L兩種濃度的丁基黃原酸鹽標準溶液。採用上述丁基黃原酸鹽標準系列的測定程式對兩種濃度的丁基黃原酸鹽標準溶液進行6次平行測定。

兩種不同濃度的丁基黃原酸鹽標準溶液6次測定的相對標準偏差均在3%以下,說明該方法具有較高的精密度。

採用上述改進法丁基黃原酸鹽標準曲線對某地表飲用水源水樣1 #、2 # 進行加標回收試驗。本方法的加標回收率為97. 0 %～98. 5 % ,說明本方法具有較好的準確度。

總結

結合前人的研究成果,探討了套用國標分析方法—《銅試劑亞銅分光光度法GB/ T5750. 8 - 2006》測定飲用水源水中丁基黃原酸鹽的方法原理、儀器試劑和一些關鍵操作技術問題。在標準分析方法的基礎上,套用改進法對丁基黃原酸鹽標準系列進行了標準曲線的繪製,對空白試驗中檢出限進行了測定,結果表明:改進法丁基黃原酸鹽標準曲線靈敏度高、線性相關性強(線性相關係數r=0.9998) ,改進法測定的檢出限(DL=0.0016mg/L) 略低於原方法規定的檢出限(DL=0.002.mg/L) ,符合檢出限測定質量控制要求。